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Estudio de los Niveles de Expresión de Genes Asociados a Lipasas Extracelulares en Cultivos de Candida palmioleophila Suplementados con Aceite de Oliva Como Única Fuente de Carbono

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dc.contributor.advisorValdivieso-Quintero, Wilfredo
dc.contributor.advisorHernandez-Peñaranda, Indira Paola
dc.contributor.authorFarelo-Traslaviña, Laura Cristina
dc.date.accessioned2022-07-29T13:40:01Z
dc.date.available2022-07-29T13:40:01Z
dc.date.issued2022-06-06
dc.descriptionDigitalspa
dc.description.abstractEl interés en la producción biotecnológica de las lipasas radica en sus diversas aplicaciones en la síntesis de ésteres, hidrólisis de grasas para la fabricación de detergentes, producción de biocombustibles, entre otras (Burkert, et al. 2004, Aceves,2012). Se conoce que la levadura Candida palmioleophila tiene capacidad para asimilar derivados de la refinación de aceite de palma (Agualimpia, et al. 2016), y aunque se han descrito perfiles de proteínas extracelulares relacionados con esta actividad, no se conocen los genes específicos involucrados en este proceso. La evaluación de la expresión de genes asociados a lipasas extracelulares en C. palmioleophila puede contribuir con la identificación de la intervención de los genes asociados en los procesos de degradación metabólica de lípidos por técnicas como RT-qPCR. Para ello, se requiere del diseño de oligonucleótidos que permitan la amplificación de genes utilizados como normalizadores y genes candidatos a lipasas. El presente trabajo muestra el diseño y evaluación de 13 parejas de oligonucleótidos para genes reportados como lipasas y para genes reportados como normalizadores y el estudio de expresión de los genes lipasa en C. palmioleophila frente a condiciones inductoras de la actividad lipasa. Para este fin se diseñaron 4 parejas de oligonucleótidos específicos para cada gen y se evaluó su amplificación a partir de ADN genómico (ADNg) y ADN complementario (ADNc). Para realizar una aproximación a la estabilidad de la expresión de los genes de interés se utilizó el algoritmo GNORM. Se observó mayor expresión de la secuencia identificada como LipIII cuando la levadura fue expuesta a medios de cultivo con aceite de oliva como fuente de carbono. Los resultados obtenidos favorecen el estudio de la expresión génica en el entendimiento de la maquinaria metabólica que utiliza C. palmioleophila en la utilización de lípidos y abre la puerta para su uso en la evaluación de otras rutas metabólicas de interés.spa
dc.description.abstractThe interest in the biotechnological production of lipases lies in their various applications such as the synthesis of esters, hydrolysis of fats for the manufacture of detergents, production of biofuels, among others (Burkert, et al. 2004, Aceves, 2012). It is known that the yeast Candida palmioleophila has the capacity to assimilate derivatives of palm oil refining (Agualimpia, et al. 2016), and although profiles of extracellular proteins related to this activity have been described, the specific genes involved in this activity are not known. The evaluation of the expression of genes associated with extracellular lipases in C. palmioleophila by techniques such as RT-qPCR can contribute to the identification of the intervention of associated genes in the processes of metabolic degradation of lipids. For this, the design of oligonucleotides that allow the amplification of genes used as normalizers and candidate genes for lipases is required. The present work shows the design and evaluation of 13 pairs of oligonucleotides for genes reported as lipases and for genes reported as normalizers and the study of expression of lipase genes in C. palmioleophila against conditions that induce lipase activity. For this purpose, specific oligonucleotides were designed and their amplification capacity from genomic DNA (gDNA) and complementary DNA (cDNA) was evaluated. To make an approximation to the stability of the expression of the genes of interest, the GNORM algorithm was used. Higher expression of the sequence identified as LipIII was observed when the yeast was exposed to culture media with olive oil as carbon source. The results obtained favor the study of gene expression in the understanding of the metabolic machinery used by C. palmioleophila in the utilization of lipids and open the door for its use in the evaluation of other metabolic pathways of interest.eng
dc.description.degreelevelPregradospa
dc.description.degreenameMicrobiólogo Industrialspa
dc.description.tableofcontentsIntroducción .................................................................................................................................. 14 1. Planteamiento Problema ................................................................................................. 16 2. Justificación .................................................................................................................... 19 3. Objetivos ......................................................................................................................... 22 3.1 Objetivo General............................................................................................................. 22 3.2 Objetivos Específicos ..................................................................................................... 22 4. Marco Teórico ................................................................................................................ 23 4.1 Descripción de las Lipasas e Interés en la Industria ....................................................... 23 4.2 Microorganismos Productores de Lipasas ...................................................................... 23 4.3 Lipasas en el Género Candida ........................................................................................ 24 4.4 Candida palmioleophila ................................................................................................. 25 4.5 Análisis de Expresión Génica ......................................................................................... 27 4.6 Análisis de Expresión Relativa por RT-qPCR................................................................ 27 5. Metodología .................................................................................................................... 30 5.1 Cultivo y Mantenimiento de Candida palmioleophila ................................................... 30 5.2 Evaluación del Crecimiento de C. palmioleophila. ........................................................ 30 5.3 Extracción de ARN Total ............................................................................................... 31 5.4 Diseño y Evaluación de Oligonucleótidos...................................................................... 31 5.5 Amplificación por Reacción en Cadena de la Polimerasa (RCP)................................... 32 5.6 Secuenciación de Fragmentos de ADN Obtenidos por RCP .......................................... 33 5.7 Extracción de ARN Total de C. palmioleophila............................................................. 34 5.8 Obtención de ADNc por Retro Transcripción ................................................................ 34 5.9 RCP en Tiempo Real (qPCR) ......................................................................................... 35 5.10 Evaluación de Genes Candidatos a Normalizadores ...................................................... 36 5.11 Aproximación al Análisis de Expresión Relativa ........................................................... 36 6. Resultados y Discusión ................................................................................................... 38 6.1 Microorganismos y Manipulación .................................................................................. 38 6.2 Crecimiento de C. palmioleophila con Fuentes de Carbono Oleosas ............................ 39 6.3 Diseño y Evaluación de Oligonucleótidos...................................................................... 41 6.4 Amplificación por Reacción en Cadena de la Polimerasa (RCP)................................... 42 6.5 Amplificación por qPCR ................................................................................................ 47 6.6 Aproximación a la Estabilidad de Genes Normalizadores ............................................. 50 6.7 Aproximación al Análisis de Expresión Génica ............................................................. 52 7. Conclusiones ................................................................................................................... 55 8. Recomendaciones ........................................................................................................... 56 Referencias Bibliográficas ............................................................................................................ 57spa
dc.format.extent65 pspa
dc.format.mimetypeapplication/pdfspa
dc.identifier.localT 33.22 F172e
dc.identifier.urihttps://repositorio.udes.edu.co/handle/001/7312
dc.language.isospaspa
dc.publisher.facultyFacultad de Ciencias Exactas, Naturales y Agropecuariasspa
dc.publisher.placeBucaramanga, Colombiaspa
dc.publisher.programMicrobiología Industrialspa
dc.rightsDerechos Reservados - Universidad de Santander, 2022spa
dc.rights.accessrightsinfo:eu-repo/semantics/openAccessspa
dc.rights.creativecommonsAtribución-NoComercial-SinDerivadas 4.0 Internacional (CC BY-NC-ND 4.0)spa
dc.rights.urihttps://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0/spa
dc.subject.proposalC. Palmioleophilaspa
dc.subject.proposalLipasasspa
dc.subject.proposalExpresión génicaspa
dc.subject.proposalRT-qPCRspa
dc.subject.proposalGen más expresadospa
dc.subject.proposalLipaseseng
dc.subject.proposalGene expressioneng
dc.subject.proposalNormalizing geneseng
dc.titleEstudio de los Niveles de Expresión de Genes Asociados a Lipasas Extracelulares en Cultivos de Candida palmioleophila Suplementados con Aceite de Oliva Como Única Fuente de Carbonospa
dc.typeTrabajo de grado - Pregradospa
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dcterms.audienceTodas las Audienciasspa
dcterms.referencesAceves, A. (2012). Producción Biotecnológica de Lipasas Microbianas, una alternativa sostenible para la utilización de residuos agroindustriales. Vitae,19(3), undefined-undefined. https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=1698/169825291001spa
dcterms.referencesAgualimpia B., Otero J., Zafra G. (2016), Evaluation of native microorganisms for biodegradation of oil and grease in palm oil refinery effluents, Biotecnol. Aplicada, 33(1), 1221-1226.spa
dcterms.referencesArroyo, M., Quesada, M., Quesada, R. (2008). Aplicación de sistemas de biorremediación de suelos y aguas contaminadas por hidrocarburos. Geocisa. Div. Protección Ambiental de Suelos: 297-305. http://aguas.igme.es/igme/publica/pdflib15/028.pdfspa
dcterms.referencesBarragan, M. (2011). Caracterización in vitro de factores asociados a virulencia en Candida palmioleophilaspa
dcterms.referencesBenjamin, S., Pandey, A. (1998). Candida rugosa lipases: molecular biology and versatility in biotechnology. Yeast 14 (12): 1069-87spa
dcterms.referencesBerner, D. L., Hammond, E. G. (1970). Phylogeny of lipase specificity. Lipids. 5 (6): 558-62spa
dcterms.referencesBurkert, J., Maugeri, F., Rodrigues, M. (2004). Optimization of extracellular lipase production by Geotrichum sp. using factorial design. Bioresour Technol. 77 – 84.spa
dcterms.referencesColette B., Shindler D.B., Sijher J.S. y Kushner D.J. (1978). Stimulation of lipase production during bacterial growth on alkanes. J. Bacteriol. 133, 601-606.spa
dcterms.referencesColla, L., Rizzardi J., Pinto,M., Reinehr ,C., Bertolin, T., Vieiraa, J. (2010). Simultaneous production of lipases and biosurfactants by submerged and solid-state bioprocesses. Bioresour Technol. 8308 - 8314.spa
dcterms.referencesCortázar, A., & Rincón, E. (2004). Métodos Físico-Químicos en Biotecnología PCR. Universidad Nacional Autónoma de México Instituto de Biotecnología. (pp, 43).spa
dcterms.referencesCuevas Reyes, Elizabeth et al.Evaluación de oligonucleótidos para medir expresión genética durante la marchitez bacteriana del tomate. Rev. fitotec. mex [online]. 2016, vol.39, n.2, pp.141-150. ISSN 0187-7380.spa
dcterms.referencesCuevas, E. et al. (2016). Evaluación de oligonucleótidos para medir expresión genética durante la marchitez bacteriana del tomate. Revista fitotecnia mexicana, 39(2), 141-150. Recuperado en 14 de mayo de 2020, de http://www.scielo.org.mx/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0187-73802016000200141&lng=es&tlng=es.spa
dcterms.referencesDatta N., Arendrup M.C., Saunte J.P. (2015). First report of Candida palmioleophila endogenous endophthalmitis. Acta ophthalmologica. 93, e517-e518.spa
dcterms.referencesDavid Svec, Ales Tichopad, Vendula Novosadova, Michael W. Pfaffl, Mikael Kubista (2015). How good is a PCR efficiency estimate: Recommendations for precise and robust qPCR efficiency assessments, Biomolecular Detection and Quantification, Volume 3; 9-16, ISSN 2214-7535, https://doi.org/10.1016/j.bdq.2015.01.005. (https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S2214753515000169)spa
dcterms.referencesDe León, U., & Bejega García, V. (2015). Aplicación de lipasas microbianas para la producción de biocombustibles similares al biodiésel que integran la glicerina en forma de monoglicérido. Universidad de Córdoba.spa
dcterms.referencesDiez, A. E. A., & Sandoval, L. M. C. (2012). Producción biotecnológica de lipasas microbianas, una alternativa sostenible para la utilización de residuos agroindustriales. Vitae, 19(3), 244–247. Retrieved from http://www.redalyc.org/html/1698/169825291001/spa
dcterms.referencesEdmunds, R. C., McIntyre, J. K., Luckenbach, J. A., Baldwin, D. H. & Incardona, J. P. (2014). Toward Enhanced MIQE Compliance: Reference Residual Normalization of qPCR Gene Expression Data. J. Biomol. Tech. 25, 54–60.spa
dcterms.referencesErtugrul S, Donmez G, Takac S. (2007). Isolation of lipase producing Bacillus sp. From olive mill wastewater and improving its enzyme activity. J Hazard Mater. 149 (3): 720 – 724spa
dcterms.referencesExpósito-Rodríguez M, Borges AA, Borges-Pérez A, Pérez JA. (2008). Selection of internal control genes for quantitative real-time RT-PCR studies during tomato development process. BMC Plant Biol. Dec 22;8:131. doi: 10.1186/1471-2229-8-131. PMID: 19102748; PMCID: PMC2629474.spa
dcterms.referencesFeng, X., Wu, J., Ling, B., Yang, X., Liao, W., Pan, W., & Yao, Z. (2014). Development of Two Molecular Approaches for Differentiation of Clinically Relevant Yeast Species Closely Related to Candida guilliermondii and Candida famata. Journal of Clinical Microbiology, 52(9), 3190-3195. https://doi.org/10.1128/jcm.01297-14spa
dcterms.referencesFerrer P, Montesinos JL, Valero F, Sola C. (2001). Production of native and recombinant lipases by Candida rugosa. Appl Biochem Biotechnol. Sep; 95 (3): 221 - 56.spa
dcterms.referencesGonzález-Bacerio, J., Rodríguez Hernández, J., & del Monte Martínez, A. (2010). Lipases: enzymes with potential for the development of immobilized biocatalysts by interfacial adsorption. Revista Colombiana de Biotecnología, 12(1), 113–140. Retrieved from http://www.redalyc.org/html/776/77617786013/spa
dcterms.referencesGotor, V. Org. Proc. Res. Dev. 2002, 6, 420-426.spa
dcterms.referencesGuénin, Stéphanie & Mauriat, Mélanie & Pelloux, Jérôme & Van Wuytswinkel, Olivier & Bellini, Catherine & Gutierrez, Laurent. (2009). Normalization of QRT-PCR data: The necessity of adopting a systematic, experimental conditions-specific, validation of references. Journal of experimental botany. 60. 487-93. 10.1093/jxb/ern305.spa
dcterms.referencesHernández Garnica, E. (2021). Identificación de Genes de Lipasas Extracelulares en Candida Palmioleophila y su Relación con Genes Lip2 y Lip6.spa
dcterms.referencesImai T, Suzuki M, Sakano H. Ciencia. (2006). 314 :657–661.spa
dcterms.referencesJaeger, K. E., Reetz, M. T. (1998). Microbial lipases form versatile tools for biotechnology. Trends Biotechnol 16 (9): 396-403spa
dcterms.referencesJafari, N., Kasra-Kermanshahi, R., & Reaz Soudi, M. (2013). Screening, identification and optimization of a yeast strain, Candida palmioleophila JKS4, capable of azo dye decolorization. Iranian Journal of Microbiology, 5(4), 434–440. Retrieved from http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25848518spa
dcterms.referencesKałużna, M., Kuras, A. y Puławska, J. (2017). Validación de genes de referencia para la normalización de la expresión del gen RT-qPCR de genes de virulencia de Erwinia amylovora en brotes de manzana. Informes científicos , 7 (1), 2034. https://doi.org/10.1038/s41598-017-02078-4spa
dcterms.referencesKarlen, Y., McNair, A., Perseguers, S., Mazza, C. y Mermod, N. (2007). Significación estadística de la PCR cuantitativa. BMC bioinformática, 8 , 131. https://doi.org/10.1186/1471-2105-8-131spa
dcterms.referencesLi, Q., Skinner, J. & Bennett, J. E. (2012). Evaluation of reference genes for real-time quantitative PCR studies in Candida glabrata following azole treatment. BMC Mol. Biol. 13, 22.spa
dcterms.referencesLivak K, Schmittgen T. (2001). Analysis of relative gene expression data using real time quantitative PCR and the 2-ΔΔCt. Methods 25: 402-408. doi: 10.1006/ meth.2001.1262spa
dcterms.referencesMiller, S. A., Dykes , D. D., & Polesky, H. F. (1988). A simple salting out procedure for extracting DNA from human nucleated cells. Nucleic Acids Research, 16(3), 1215. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC334765/spa
dcterms.referencesMoreno, L. et al. (2013). Expression and purification of rotavirus structural proteins VP5* andspa
dcterms.referencesMukherjee, K. D. (1996). Plant lipases in lipid biotransformations. En Malcata, F. X. Engineering of / with lipases. Netherlands: Kluwer Academic Publishers. p. 391-401.spa
dcterms.referencesMullis, A., Lu, Z., Zhan, Y., Wang, T., Rodriguez, J., Rajeh, A., & Lin, Z. (2019). Parallel Concerted Evolution of Ribosomal Protein Genes in Fungi and Its Adaptive Significance. Molecular Biology and Evolution, 37(2), 455–468. https://doi.org/10.1093/molbev/msz229spa
dcterms.referencesNailis, H., Kucharíkov, S., Řičicovńn, M., Van Dijck, P., Deforce, D., Nelis, H., & Coenye, T. (2010). Real-time PCR expression profiling of genes encoding potential virulence factors in Candida albicans biofilms: Identification of model- dependent and -independent gene expression. BMC Microbiology, 10, 1–11. https://doi.org/10.1186/1471-2180-10-114spa
dcterms.referencesNakase, T., Itoh, M., Suzuki, M., Komagata, K., & Kodama, T. (1988). Candida palmioleophila sp. nov., a yeast capable of assimilating crude palm oil, formerly identified as Torulopsis candida. The Journal of general and applied microbiology, 34(6), 493-498. https://www.jstage.jst.go.jp/article/jgam1955/34/6/34_6_493/_article/-char/ja/spa
dcterms.referencesNarsai, R., Ivanova, A., Ng, S. et al. (2010). Definición de genes de referencia en Oryza sativa utilizando conjuntos de datos de transcriptomas de órganos, desarrollo, bióticos y abióticos. BMC Plant Biol 10, 56. https://doi.org/10.1186/1471-2229-10-56spa
dcterms.referencesNeugnot V, Moulin G, Dubreucq E, Bigey F. (2002). The lipase/acyltransferase from Candida parapsilosis: molecular cloningn and characterization of purified recombinant enzymes. Eur. J. Biochem. 269(6),1734-45.spa
dcterms.referencesNolan, T., Hands, R. & Bustin, S. (2006). Quantification of mRNA using real-time RT-PCR. Nat Protoc 1, 1559–1582 doi:10.1038/nprot.2006.236spa
dcterms.referencesOnodera, K. (2007). Selección de tripletes en el extremo 3' para cebadores de reacción en cadena de la polimerasa. En Yuryev, A., editor, PCR Primer Design , páginas 61-74. Prensa Humana. URL http://books.google.com/books?id=prgbLkMNy9wC&pg=PA61 .spa
dcterms.referencesPandey, A., Benjamin, S., Soccol, C. R., Nigman, P., Krieger N., Soccol, V. T. (1999). The realm of microbial lipases in biotechnology. Biotechnol. Appl Biochem 29: 119-31.spa
dcterms.referencesPark, M., Do, E., & Jung, W. H. (2013). Lipolytic enzymes involved in the virulence of human pathogenic fungi. Mycobiology, 41(2), 67-72. https://doi.org/10.5941/MYCO.2013.41.2.67spa
dcterms.referencesPárraga, Mario, & López, Luis A., & Escolar, Fernando, & Bonilla, Edmundo, & Mazo, Jesús del (2002). Cuantificación de la expresión génica a partir de un número limitado de células mediante RT-PCR en tiempo real. Bioquímica, 27 (1),3-7.[fecha de Consulta 23 de Mayo de 2022]. ISSN: 0185-5751. Disponible en: https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=57611570001spa
dcterms.referencesRincon L., Agualimpia B., Zafra G., (2018). Differential Protein Profiles of the Lipolytic Yeast Candida palmioleophila under Different Growth Conditions, Chemical Engineering Transactions, 64, 343-348.spa
dcterms.referencesRincón, L. J., Agualimpia, B., & Zafra, G. (2018). Differential protein profiles of the lipolytic yeast Candida palmioleophila under different growth conditions. Chemical Engineering Transactions, 64. https://doi.org/10.3303/CET1864058spa
dcterms.referencesRodriguez-Mateus Z., Agualimpia B., Zafra G., (2016). Isolation and Molecular Characterization of Microorganisms with Potential for the Degradation of Oil and Grease from Palm Oil Refinery Wastes, Chem. Eng. Trans., 49, 517-522. DOI:10.3303/CET1649087spa
dcterms.referencesRotticci-Mulder JC, Gustavsson M, Holmquist M, Hult K, Martinelle M. (2001). Expression in Pichia pastoris of Candida antarctica lipase B and lipase B fused to a cellulose-binding domain. Protein Expr Purif. Apr;21(3):386-92. doi: 10.1006/prep.2000.1387. PMID: 11281712.spa
dcterms.referencesRueda, Angelica. (2013). Problema bioquímico: Determinación del ciclo umbral y la eficiencia para la PCR cuantitativa en tiempo real. REB. Revista de educación bioquímica, 32(1), 36-39. Recuperado en 24 de mayo de 2022, de http://www.scielo.org.mx/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1665-19952013000100006&lng=es&tlng=es.spa
dcterms.referencesRuiz, C., Falcocchio, S., Pastor, F. I., Saso, L., Díaz, P. (2007). Helicobacter pylori EstV: identification, cloning, and characterization of the first lipase isolated. Appl Environ Microbiol 73 (8): 2423-31.spa
dcterms.referencesRupani, Parveen Fatemeh & Singh, Rajeev & Ibrahim, M. & Esa, Norizan. (2010). Review of Current Palm Oil Mill Effluent (POME) Treatment Methods: Vermicomposting as a Sustainable Practice. World Applied Sciences Journal. 10. 1190-1201.spa
dcterms.referencesSanta Lucía, J. (2007). Principios físicos y software visual-OMP para un diseño óptimo de PCR. Métodos Mol. Biol. , 402:3-34.URL https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/17951788 .spa
dcterms.referencesSchmittgen T. D. and K. J. Livak (2008) Analyzing real-time PCR data by the comparative CT method. Nature Protocols 3:1101-1108.spa
dcterms.referencesSchofield, David & Westwater, Caroline & Warner, Thomas & Balish, Edward. (2005). Differential Candida albicans lipase gene expression during alimentary tract colonization and infection. FEMS microbiology letters. 244. 359-65. 10.1016/j.femsle.2005.02.015.spa
dcterms.referencesSharma D., Sharma B., Shukla A. (2011). Biotechnological Approach of Microbial Lipase: A Review, Biotechnology, 10, 23-40. DOI:10.3923/biotech.2011.23.40spa
dcterms.referencesSobecky, P. A., Coombs, J. M. (2009). Horizontal gene transfer in metal and radionuclide contaminated soils. Methods in Molecular Biology 532: 455-72.spa
dcterms.referencesSónia Silva, Melyssa Negri, Mariana Henriques, Rosário Oliveira, David W. Williams, Joana Azeredo, (2012). Candida glabrata, Candida parapsilosis and Candida tropicalis: biology, epidemiology, pathogenicity and antifungal resistance, FEMS Microbiology Reviews, Volume 36, Issue 2, , Pages 288–305, https://doi.org/10.1111/j.1574-6976.2011.00278.xspa
dcterms.referencesStolc, V., Katz, A., & Altman, S. (1998). Rpp2, an essential protein subunit of nuclear RNase P , is required for processing of precursor tRNAs and 35S precursor rRNA in Saccharomyces cerevisiae. Proceedings of the National Academy of Sciences (Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America), 95(June), 6716–6721. https://doi.org/10.1073/pnas.95.12.6716spa
dcterms.referencesTeste, MA., Duquenne, M., François, J.M. et al. Validación de genes de referencia para el análisis cuantitativo de la expresión mediante RT-PCR en tiempo real en Saccharomyces cerevisiae. BMC Molecular Biol 10, 99 (2009). https://doi.org/10.1186/1471-2199-10-99spa
dcterms.referencesVakhlu J, Kour A. (2006). Yeast lipases: enzyme purification, biochemical properties and gene cloning. Eur J Biotechnol. 9 (1): 69 - 81spa
dcterms.referencesVan Der Walle, N. (1927). Über synthetische Wirkung bakterieller lipasen. Cbl Bakt Parasitenk Inktionskr; 70: 369-73.spa
dcterms.referencesVP8* in bacteria E. coli BL21(DE3). Rev. Colomb. Biotecnol. Vol. XV No. 1spa
dcterms.referencesWang, J., Mahmood, Q., Qiu, J. P., Li, Y. S., Chang, Y. S., Chi, L. N., & Li, X. D. (2015). Zero discharge performance of an industrial pilot-scale plant treating palm oil mill effluent. BioMed Research International, 2015, 617861. https://doi.org/10.1155/2015/617861spa
dcterms.referencesWolf, A. and KuKuruga, M, A. (1996) T lymphocytes in the murine vaginal mucosa are phenotypically distinct from those in the periphery. Infection and Immunity, 64, 3793–3799.spa
dcterms.referencesZafra, G; Regino, R; Agualimpia, B; Aguilar, F. (2016). Molecular Characterization and Evaluation of Oil-degradingspa
dcterms.referencesZhao, WS, Hu, SL, Yu, K., Wang, H., Wang, W., Loor, J. y Luo, J. (2014). Lipoproteína lipasa, expresión tisular y efectos sobre genes relacionados con la síntesis de ácidos grasos en células epiteliales mamarias de cabra. Revista internacional de ciencias moleculares , 15 (12), 22757–22771. https://doi.org/10.3390/ijms151222757spa
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