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Evaluación de la Viabilidad, Pureza y Estabilidad Funcional de la Colección Microbiana de PGPM UDES Aislada de Sacha Inchi e Higuerilla

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dc.contributor.advisorAgualimpia Valderrama, Bayron-Enrique
dc.contributor.advisorAcevedo Isidro, Carlos-Augusto
dc.contributor.authorRodríguez-Arias, Valentina
dc.date.accessioned2022-04-01T17:56:09Z
dc.date.available2022-04-01T17:56:09Z
dc.date.issued2021-12-18
dc.descriptionDigitalspa
dc.description.abstractAl conservar los microorganismos ex situ las colecciones se identifican como depósitos de recursos biológicos y constituyen una manera esencial para conservar nuestra biodiversidad y favorecer el estudio de problemas que involucran microorganismos con características de interés clínico o industrial. El propósito de este trabajo fue evaluar la viabilidad, pureza y estabilidad funcional de la colección microbiana PGPM UDES que se encontraba en el cerapio de la Universidad de Santander desde el año 2016. Para llevar a cabo este proyecto primero se realizó una descongelación gradual de los viales que se encontraban criopreservados con el fin de reactivar los microorganismos en un medio de extracto de levadura de caldo nutritivo (NBY). Para la evaluación como microorganismos promotores de crecimiento vegetal (PGPM) se usó un agar carente de nitrógeno asociado al ácido málico como fuente de carbono para observar la capacidad fijadora de nitrógeno mientras que, para la actividad solubilizadora de fosfatos fue un medio de fosfato de calcio como fuente de fósforo. Se obtuvieron 32 microorganismos viables de la colección que equivalen al 16, 58% de los cuales 20 aislados presentaron la capacidad de fijar nitrógeno y 16 de solubilizar fosfatos después de tres repiques sucesivos, se usó un análisis de varianza ANOVA que logra explicar el 79% de la variabilidad de los datos. Finalmente se logró que la actividad metabólica de los microorganismos se encuentra relacionada con el repique de este ya que se ha podido demostrar que después de algunos ciclos de inoculación los genes pierden estabilidad.spa
dc.description.abstractBy conserving microorganisms ex situ, collections are identified as deposits of biological resources and constitute an essential way to conserve our biodiversity and favor the study of problems involving microorganisms with characteristics of clinical or industrial interest. The purpose of this work was to evaluate the viability, purity and functional stability of the PGPM UDES microbial collection that was in the cerapio of the University of Santander since 2016. To carry out this project, a gradual thawing of the vials that were cryopreserved in order to reactivate the microorganisms in a nutrient broth yeast extract (NBY) medium. For the evaluation as plant growth promoting microorganisms (PGPM), a nitrogen-free agar associated with malic acid was used as a carbon source to observe the nitrogen-fixing capacity, while for the phosphate solubilizing activity it was a calcium phosphate medium. As a source of phosphorus. 32 viable microorganisms were obtained from the collection that are equivalent to 16, 58% of which 20 isolates presented the ability to fix nitrogen and 16 to solubilize phosphates after three successive rings, an ANOVA analysis of variance was used with 79% reliability. . Finally, it was achieved that the metabolic activity of microorganisms is related to its ringing since it has been shown that after some inoculation cycles the genes lose stability.eng
dc.description.degreelevelPregradospa
dc.description.degreenameMicrobiólogo Industrialspa
dc.description.tableofcontentsIntroducción .................................................................................................................................. 15 1. Planteamiento del Problema ......................................................................................... 17 2. Pregunta de Investigación ............................................................................................ 19 3. Justificación .................................................................................................................. 20 4. Marco Teórico .............................................................................................................. 22 4.1 Colección Biológica ..................................................................................................... 22 4.1.1 Colección Microbiana .................................................................................................. 22 4.2 Instituto Alexander Von Humboldt .............................................................................. 22 4.2.1 Registro Único Nacional de Colecciones Biológicas ................................................... 23 4.2.2 Viabilidad Microbiana .................................................................................................. 23 4.3 Microorganismos Promotores de Crecimiento Vegetal ............................................... 23 4.3.1 Microorganismos Fijadores de Nitrógeno .................................................................... 24 4.3.2 Microorganismos Solubilizadores de Fósforo .............................................................. 25 4.4 Métodos de Conservación Microbiana ......................................................................... 26 4.4.1 Métodos de Conservación a Largo Plazo ..................................................................... 26 4.4.2 Métodos de Conservación a Mediano Plazo ................................................................ 27 4.4.2.1 Método de Conservación Castellani. ............................................................................ 27 5. Marco Legal ................................................................................................................. 29 5.1 Decreto 1376 de 2013................................................................................................... 29 5.2 Decreto 1375 del 2013 ................................................................................................. 29 5.3 Ley 1955 de 2019 ......................................................................................................... 29 5.4 Ley 1333 de 2009 ......................................................................................................... 30 5.5 Decreto 1076 de 2015................................................................................................... 30 6. Marco Referencial ........................................................................................................ 31 7. Hipótesis ....................................................................................................................... 33 8. Objetivos ...................................................................................................................... 34 8.1 Objetivo General .......................................................................................................... 34 8.2 Objetivos Específicos ................................................................................................... 34 9. Metodología.................................................................................................................. 35 9.1 bicación...................................................................................................................... 35 9.2 Población .............................................................................................................. 35 9.3 Reactivación Microbiana .............................................................................................. 35 9.3.1 Descongelación Gradual para Bacterias ....................................................................... 35 9.3.2 Reactivación y Depuración Microbiana ....................................................................... 35 9.3.3 Caracterización Macro y Microscópica ........................................................................ 36 9.3.4 Porcentaje de Viabilidad .............................................................................................. 36 9.4 Evaluación de la Estabilidad Funcional ....................................................................... 36 9.4.1 Microorganismos con la Actividad Metabólica de Fijar Nitrógeno ............................. 37 9.4.2 Microorganismos con la Actividad Metabólica Solubilizar Fosfatos .......................... 37 9.5 Conservación de los Microorganismos ........................................................................ 38 9.5.1 Conservación Bacteriana .............................................................................................. 38 9.5.2 Conservación de Hongos y Levaduras ......................................................................... 38 9.5.3 Diseño Experimental .................................................................................................... 39 9.6 Protocolo de Conservación para la Colección PGPM UDES ...................................... 39 10. Resultados y Discusión ................................................................................................ 40 10.1 Reactivación Microbiana .............................................................................................. 40 10.2 Descripción Macroscópica y Microscópica ................................................................. 41 10.3 Depuración Microbiana ................................................................................................ 44 10.4 Porcentaje de Viabilidad .............................................................................................. 45 10.5 Evaluación de la Actividad Metabólica ........................................................................ 47 10.5.1 Evaluación de la Fijación del Nitrógeno ...................................................................... 48 10.5.2 Evaluación de la Solubilización del Fosforo ................................................................ 49 10.6 Protocolo de la Colección Microbiana PGPM UDES .................................................. 50 10.7 Análisis Estadístico ...................................................................................................... 50 11. Conclusiones ................................................................................................................ 55 12. Recomendaciones ......................................................................................................... 56 Referencias Bibliográficas ............................................................................................................ 57 Apéndices ...................................................................................................................................... 63spa
dc.format.extent97 pspa
dc.format.mimetypeapplication/pdfspa
dc.identifier.localT 33.21 R627e
dc.identifier.urihttps://repositorio.udes.edu.co/handle/001/6450
dc.language.isospaspa
dc.publisher.facultyFacultad de Ciencias Exactas, Naturales y Agropecuariasspa
dc.publisher.placeBucaramanga, Colombiaspa
dc.publisher.programMicrobiología Industrialspa
dc.rightsDerechos Reservados - Universidad de Santander, 2021spa
dc.rights.accessrightsinfo:eu-repo/semantics/openAccessspa
dc.rights.creativecommonsAtribución-NoComercial-SinDerivadas 4.0 Internacional (CC BY-NC-ND 4.0)spa
dc.rights.urihttps://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0/spa
dc.subject.proposalColección microbianaspa
dc.subject.proposalPGPMspa
dc.subject.proposalSolubilización de fosfatosspa
dc.subject.proposalFijación de nitrógenospa
dc.subject.proposalMicrobial collectioneng
dc.subject.proposalPGPMeng
dc.subject.proposalPhosphate solubilizationeng
dc.subject.proposalNitrogen fixationeng
dc.titleEvaluación de la Viabilidad, Pureza y Estabilidad Funcional de la Colección Microbiana de PGPM UDES Aislada de Sacha Inchi e Higuerillaspa
dc.typeTrabajo de grado - Pregradospa
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dcterms.audienceTodas las Audienciasspa
dcterms.referencesAntunes, A. Stackebrandt, E. Lima, N. (2016). Impulsando la bioeconomía: colecciones culturales europeas y educación y formación en microbiología. Trends Microbiol, 77–79.spa
dcterms.referencesArencibia, D. Rosario, L. Gámez, R. (2008). Métodos generales de conservación de microorganismos. Finlay, 1-14.spa
dcterms.referencesBaca, B. (2000). Fijación biológica de nitrógeno. Elementos, 43-49spa
dcterms.referencesBeltrán, M. (2009). Evaluación del efecto del sistema de producción del cultivo del arroz (secano e inundado) sobre la población microbiana y la actividad enzimática asociada al metabolismo edáfico del fósforo. [Tesis de Maestría]. Universidad Nacional de Colombia.spa
dcterms.referencesBorman, A. Szekely, A. Campbell, C. Johnson, E. (2006). Evaluation of the viability of pathogenic filamentous fungi after prolonged storage in sterile water and review of recent published studies on storage methods. Mycopathologia. 161-179.spa
dcterms.referencesBueno, L. Gallardo, R. (1998). Preservación de hongos filamentosos en agua destilada estéril instituto Cubano de Investigaciones de los Derivados de la Cata de Azúcar, Ciudad de la Habana, cuba. Iberoam Micol, 166-168.spa
dcterms.referencesCastellani, A. (1963). Further researches onthelong viability and growth of manypaithogenicfungiandsome bacteria in esteriledistiled water. Instituto de Medicina Tropical 147-182spa
dcterms.referencesCastro, G. Hernández, T. Aquino, C. (2000). Manual sobre conservación de microorganismos en el Instituto Politécnico Nacional. Escuela Nacional de Ciencias Biológicas, 21-25.spa
dcterms.referencesDecreto 1076 de 2015. Por medio del cual se expide el Decreto Único. 24 de junio 2021. Diario oficial, 49523. https://www.funcionpublica.gov.co/eva/gestornormativo/norma_pdf.php?i=78153spa
dcterms.referencesDecreto 1375 de 2013. Por el cual se reglamentan las colecciones biológicas. 27 de junio de 2013. Diario oficial, 48834. http://www.humboldt.org.co/images/pdf/Colecciones%20Biol%C3%B3gicas%20-DECRETO%201375%20DEL%2027%20DE%20JUNIO%20DE%202013%20(2).pdfspa
dcterms.referencesDecreto 1376 de 2013. Por el cual se reglamenta el permiso de recolección de especímenes de especies silvestres de la diversidad biológica con fines de investigación científica no comercial. 27 de junio de 2013 Diario oficial, 48834. http://www.suin-juriscol.gov.co/viewDocument.asp?ruta=Decretos/1275905spa
dcterms.referencesDiogo, H. Sarpieri, A. Pires, M. (2010). Preservação de fungos em água destilada. An Bras Dermatol. 4-135.spa
dcterms.referencesFernández, L. Zalba, P. Gomez, M. Sagardoy, M. (2005). Bacterias solubilizadoras de fosfato inorgánico aisladas de suelos de la región sojera. Suelo, 31-37.spa
dcterms.referencesFernández, M. (2007). Fósforo amigo o enemigo. ICIDCA, 51-53.spa
dcterms.referencesFloccari M. (1998). Métodos de conservación de cultivos bacterianos. Rev Arg Microbiol, 42-51.spa
dcterms.referencesFloccari, M. (2005). Federación Latinoamericana de Colecciones de Cultivos Microbianos. Agrociencia, 20-417.spa
dcterms.referencesGonzález, H. Fuentes, N. (2017). Mecanismo de acción de cinco microorganismos promotores de crecimiento vegetal. Ciencia Agraria, 17-3spa
dcterms.referencesGonzález, J. Jiménez, J. (2013). Colecciones microbianas: Importancia, establecimiento y regulación. Microbiol, 23–33spa
dcterms.referencesGraciano, M. Carcaño, M. Ferrera, R. Pérez, J. Molina, J. Bashan, Y. (2006). Actividad nitrogenasa, producción de fitohormonas, sideróforos y antibiosis en cepas de Azospirillum y Klebsiella aisladas de maíz y teocintle. Terra Latinoamericana, 493-502.spa
dcterms.referencesGutierrez, S. (2006). Fundamentos de ciencias básicas aplicadas a la odontología. Scients, 11-13spa
dcterms.referencesHawksworth, D. Sastramihardja, I. Kokke, R. Stevenson, R. (1999). Guidelines for the establishment and operation of collections of cultures of microorganisms. World Federation of Culture Collection Standard Committee. Simwoth Press, 24-31spa
dcterms.referencesHubálek, Z. (2003). Protectants used in the cryopreservation of microorganisms. Cryobiology, 205–229spa
dcterms.referencesInstituto de investigación de recursos biológicos Alexander von Humboldt. (2020). Acerca del instituto. Recuperado el 18 de agosto 2021, de http://www.humboldt.org.co/es/instituto/que-hacemos/acerca-del-institutospa
dcterms.referencesinteresse médico em água destilada. Inst Med Trop São Paulo, 65-159.spa
dcterms.referencesJohnston, D, & Raizada, M. (2011). Conservation and Diversity of Seed Associated Endophytes in Zea across Boundaries of Evolution, Ethnography and Ecology. PLoS ONE, 1-9.spa
dcterms.referencesKucey, R. (1983). Phosphate-solubilizing bacteria and fungi in various cultivated and virgin Alberta soils. Canadian Journal of Soil Science, 671-678.spa
dcterms.referencesLey 1333 de 2009. Por la cual se establece el procedimiento sancionatorio ambiental y se dictan otras disposiciones. 21 de Julio de 2009. Diario oficial 47417. https://www.funcionpublica.gov.co/eva/gestornormativo/norma_pdf.php?i=36879spa
dcterms.referencesLey 1955 de 2019. Por el cual se expide el plan nacional de desarrollo 2018-2022 “pacto por Colombia, pacto por la equidad”. 25 de mayo de 2019. Diario oficial 50964. http://www.suin-juriscol.gov.co/viewDocument.asp?ruta=Leyes/30036488spa
dcterms.referencesMayz, J. (2004). Fijación biológica de nitrógeno. UDO Agrícola, 1-20.spa
dcterms.referencesMedina, G. (2011). Pertinencia de elaborar colecciones biológicas una estrategia que fortalece una actitud investigativa hacia la conservación biológica. Biograf, 24-28.spa
dcterms.referencesNautiyal, C. (1999). An eficient microbiological growth medium for screening phosphate solubilizing microorganisms. FEMS Microbiology Letters, 265-270spa
dcterms.referencesObando, D. Burgos, L. Rivera, D. Rubiano, M. Bonilla, R. Divan, V. (2010). Caracterización de bacterias diazotróficas asimbióticas asociadas al eucalipto (eucalyptus sp.). Acta Biológica Colombiana, 107-120spa
dcterms.referencesOsorio, N. (2010). Microorganismos del suelo y su efecto sobre la disponibilidad de nutrientes en suelos ácidos del trópico. Suelos Ecuatoriales, 74-91.spa
dcterms.referencesPeix, A. (2001). Growth promotion of chickpea and barley by a phosphate solubilizing strain of Mesorhizobium mediterraneum under growth chamber conditions. . Soil Biol Biochem, 1-19.spa
dcterms.referencesPérez, A. Tuberquia, A. Amell, D. (2014). Actividad in vitro de bacterias endófitas fijadoras de nitrógeno y solubilizadoras de fosfatos. Agronomía Mesoamericana, 213-223.spa
dcterms.referencesPérez, E. Sulbaran, M. Ball, M. Yarzabal, L. (2007). Isolation and characterization of mineral phosphate-solubilizing bacteria naturally colonizing a limonitic crust in the south-eastern Venezuelan region. Biochem 2905–2914.spa
dcterms.referencesPilatuña, M. González, M. Mero, M. Risco, D. (2021). Evaluación agronómica de bacterias fijadoras de nitrógeno aisladas de suelos andinos en plántulas de lechuga y tomate. Investigación Agraria, 47-52.spa
dcterms.referencesPorter, J. (2000) The World View of Culture Collections. En: The Role of Culture Collections in the Era of Molecular Biology. R.R.Colwell (ed.). American Society for Microbiology. 78-79.spa
dcterms.referencesReddy, M. Kumar, S. Babita, K. Reddy, M. (2002). Biosolubilization of poorly soluble rock phosphates by Aspergillus tubingensis and Aspergillus niger. Bioresource Technology, 87-189.spa
dcterms.referencesRegistro nacional de colecciones biológicas. (2020). Que es el Registro Nacional de Colecciones Biológicas (RNC). Recuperado 18 de agosto 2021, de http://www.humboldt.org.co/es/servicios/servicios-y-recursos/registro-unico-nacional-de-colecciones-biologicas-rncspa
dcterms.referencesRibbe, M. (1997). N2 fixation by Streptomyces thermoautotrophicus involves a molybdenum-dinitrogenase and a manganese-superoxide oxidoreductase that couple reduction to the oxidation of superoxide produced from O2 by molibdenum. Agrociencia, 63-72spa
dcterms.referencesRodríguez, E. Lírio. V, Lacaz, C. (2005). Preservação de fungos e actinomicetos despa
dcterms.referencesRosas, S. Rovera, M. Correa, J. (2006). Phosphate-solubilizing Pseudomonas putida can influence the rhizobia–legume simbiosis. Biochem, 3502–350.spa
dcterms.referencesSánchez, L. Corrales, L. (2005). Evaluación de la congelación para conservación de especies autóctonas bacterianas. NOVA, 21-29spa
dcterms.referencesSánchez, L. Corrales, L. (2005). Evaluación de la congelación para conservación de especies autóctonas bacterianas. NOVA, 21-29spa
dcterms.referencesSistema de información sobre biodiversidad de Colombia SIB. (2019). Las colecciones biológicas colombianas. Recuperado el 7 de agosto 2021, de https://sibcolombia.net/proyectos/colombiabio/coleccionesenlinea/spa
dcterms.referencesUrzúa, H. (2000). Fijación simbiótica de nitrógeno en Chile: Importante herramienta para una Agricultura Sustentable. Proc. XX Reunión. Latinoamericana de Rhizobiología, 211-227spa
dcterms.referencesWeng, A. Díaz, R. Álvarez, I. (2005). Conservación de microorganismos: ¿qué debemos conocer? Revista Cubana de Higiene y Epidemiología, 2-13.spa
dcterms.referencesZuberer, D. (1998). Biological Dinitrogen Fixation: Introduction and Nonsymbiotic. En principles and applications of soil microbiology. Prentice Hal, 3-21.spa
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